MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit 磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)-生物分子-试剂-生物在线
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MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit  磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit 磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

商家询价

产品名称: MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit 磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

英文名称: MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit 磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

产品编号: 18461ES60

产品价格: 0

产品产地: Yeasen

品牌商标: Yeasen

更新时间: 2024-12-10T11:28:44

使用范围: null

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 产品信息

 

产品名称

产品编号

规格

价格(元)

MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit

磁珠法残留DNA样本前处理试剂盒(瓶装)

18461ES60

100 T

1395.00

 

产品描述

 

MolPure® Magnetic Residual DNA Sample Preparation Kit适用于生物制品样本中残留DNA检测的前处理。采用独特的磁珠和精心优化的缓冲体系,可最大限度的分离纯化样本中的微量宿主DNA。

该前处理试剂盒可与多种宿主残留qPCR检测试剂盒配合使用,包括CHO细胞残留DNA检测试剂盒(Cat#41301)、HEK293细胞残留DNA检测试剂盒(Cat#41302)、Vero细胞残留DNA检测试剂盒(Cat#41303)和E.coli残留DNA检测试剂盒(Cat#41304)。

 

产品组分

 

类别

组分编号

组分名称

产品编号/规格

18461ES60(100 T)

Part I

18461-A

蛋白酶K(20 mg/mL)

1 mL/支×2

Part Ⅱ

18461-B

磁珠悬浮液

1 mL/支×2支

18461-C

裂解液

10 mL/瓶×1瓶

18461-D

结合液

40 mL/瓶×1瓶

18461-E

洗涤液A*

24 mL/瓶×1瓶(需加36 mL乙醇)

18461-F

洗涤液B*

12 mL/瓶×1瓶(需加48 mL乙醇)

18461-G

洗脱液

10 mL/瓶×1瓶

Part Ⅲ

18461-H

糖原

900 μL/支×1支

18461-I

Poly A钾盐

600 μL/支×1支

 

运输和保存方法

 

Part I组分室温运输4℃可保存1年长期保存于-20℃。

Part II组分室温运输,室温保存,有效期1年

Part Ⅲ 组分冰袋运输,-20℃保存1年。

 

注意事项

 

1)注意观察常温保存溶液是否有析出或浑浊(尤其冬季等室温为低温环境时),可37℃水浴至溶液澄清,避免影响使用效果。

2)洗脱时可能存在磁珠残留,吸取样本时应尽量避免吸入磁珠。

3)处理样本及加样时,勤换枪头,避免交叉污染。

4)为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。

5)本产品仅作科研用途!

 

实验前准备

 

1. 自备设备和试剂:磁性分离架、杭州奥盛Auto-Pure32A核酸提取仪或其他全自动化提取仪,水浴锅或金属浴,漩涡振荡器,1.5 mL离心管,无水乙醇等。

2. 首次使用前,在洗涤液A*和洗涤液B*瓶中加入标签注明体积的无水乙醇,充分混匀后使用,并做好标记。每次使用后将瓶盖盖紧,以保持瓶中的乙醇含量。

一、手工提取操作方法

1. 样本处理

a. 待测样本为疫苗等本身含有较高的DNA含量的样本,可用1×PBS(pH=7.4)对样本进行适当比例稀释后提取(为了保证检测的准确性,使样本的检测值在标准曲线线性范围之内,通常可考虑进行100倍稀释)

b. 待测样本为干粉的,可用ddH2O将样本稀释成10 mg/mL或者100 mg/mL后使用。

2. 取100 μL样本装于1.5 mL离心管中,加入100 μL裂解液,10 μL蛋白酶K,涡旋混匀10秒。

注意:样本蛋白浓度0-100 mg/mL,蛋白酶K用量为10 μL,样本蛋白浓度100-200 mg/mL,蛋白酶K用量为20 μL。

3. 60℃孵育20 min。

4. 孵育完成后,加入400 μL结合液、6 μL糖原、9 μL Poly A钾盐涡旋混匀。  

5. 加入20 μL磁珠,涡旋混匀后,放置10分钟,每隔3分钟涡旋混匀10秒。

注意:磁珠使用前需涡旋混匀,保证磁珠彻底重悬。在一次性加样4-5次后,建议再次混匀后再行加样

6. 短暂离心后,将离心管置于磁力架上静置1-2分钟,待磁珠完全吸附,小心吸取液体。

7. 加入500 μL 洗涤液A(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),振荡或涡旋混匀,确保磁珠分散,离心管壁无聚集磁珠。

8. 短暂离心后,将离心管置于磁力架上静置1-2分钟,待磁珠完全吸附,小心吸取液体。

9. 加入500 μL 洗涤液B(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),振荡或涡旋混匀,确保磁珠分散,离心管壁无聚集磁珠。

10. 短暂离心后,将离心管置于磁力架上静置1-2 min,待磁珠完全吸附,小心吸取液体。

11. 为保证尽量吸出残留乙醇,可将离心管快速离心10 s后,置于磁力架上用10 μL移液器吸出残留乙醇。

12. 打开管盖,室温放置3 min直至乙醇挥发完。观察到磁珠表面无反光或出现裂隙即表明乙醇已挥发完全。

13. 将离心管从磁力架上取下,加入50-100 μL 70℃预热的洗脱液,振荡混匀,短暂离心后,70℃孵育5 min,期间可振荡混匀1次。

14. 短暂离心后,将离心管放置于磁力架上静置2 min,待磁珠完全吸附,小心将DNA溶液转移至新的离心管中,保存于-20℃,长期保存需放置于-80℃。